引言
核糖体在基因表达调控中十分重要,尤其是通过核糖体相关蛋白(RAPs)来调控翻译。RAPs在神经发育和免疫反应等许多生物过程中发挥重要作用,但由于缺乏有效的识别不同组织和细胞类型中的 RAP 的方法,难以对它们进行深入研究。常见的研究方法具有缺乏特异性、依赖遗传编辑和处理步骤繁琐的缺陷:密度或大小分离法,通过密度或大小对细胞裂解物进行分级,缺乏特异性【1】;Ribo-FLAG免疫沉淀(IP)法,则依赖于核糖体核心蛋白(RPs)上标记FLAG标签的遗传标记,无法在组织或患者样本中应用【2】;活性核糖体捕获-MS(ARC-MS)是一种使用Click化学来分离核糖体和RAPs的新化学方法,需要样本处理(如使用叠氮基高代氨酸),并且倾向于识别翻译早期阶段的核糖体,导致样本偏向【3】。
近日,斯坦福大学的Maria Barna和UCSF的Davide Ruggero团队合作在Molecular Cell上在线发表了题为RAPIDASH: Tag-free enrichment of ribosome associated proteins reveals composition dynamics in embryonic tissue, cancer cells, and macrophages的文章,开发了一种叫做RAPIDASH的RAPs富集方法,能够跨越多种样本类型和环境,富集并分析核糖体相关蛋白的组成动态。
RAPIDASH方法用一种带有巯基的硫键树脂,通过与核糖体RNA的特异性结合,富集核糖体及其相关的蛋白质。RAPIDASH显著富集了核糖体蛋白,较以往的超速离心方法,RAPIDASH显现出更高的特异性和有效性,能够识别大多数核糖体蛋白及相关的翻译因子。图1:RAPIDASH流程示意图:细胞质裂解物经过蔗糖垫超速离心和巯基树脂层析,富集含有RNA的高分子量复合物(Credit: Molecular Cell)研究团队使用这种方法处理了多种生物样本,包括小鼠胚胎组织、癌细胞和受刺激的巨噬细胞,并通过质谱分析(MS)鉴定富集的蛋白质,研究RAPs的动态变化。他们将RAPIDASH技术应用于小鼠E12.5阶段的胚胎组织,包括前脑、肢体和肝脏,富集并分析这些组织中的RAPs,发现前脑中特异性富集的RAPs(如Dhx30和LLPH)可能与神经发育相关,例如,LLPH在长mRNA转录本的翻译中起关键作用,这对神经系统的发育至关重要。为了探索核糖体组成如何在肿瘤进展中发生变化,他们将RAPIDASH技术应用于前列腺癌细胞系PC3,分析在抑制mTOR信号通路前后,核糖体及其相关蛋白的变化。通过质谱分析鉴定核糖体相关蛋白的变化,发现在抑制mTOR信号后,eIF4G1等翻译起始因子与核糖体的结合减少,这表明mTOR信号通路调控了特定RAPs的翻译功能。他们还探究了巨噬细胞在免疫激活后的RAP重构,通过RAPIDASH技术富集巨噬细胞在TLR3和TLR4免疫激活后不同时间点的核糖体,分析其组成的动态变化,发现免疫激活后,许多参与抗病毒反应的RAPs如IFIT家族蛋白显著富集。这一结果表明,核糖体不仅是蛋白合成的机器,还参与了免疫反应的调控。综上所述,这个研究验证了RAPIDASH技术在小鼠胚胎干细胞中的应用,并将这个技术应用于组织特异性功能中。同时癌细胞和免疫细胞中的实验展示了RAPIDASH技术能揭示癌症和免疫反应中核糖体的动态变化。模式图(Credit: Molecular Cell)参考文献
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文章来源|“BioArt”
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